Agar UTI

Medio cromogénico, no selectivo y diferencial para el urocultivo: permite el aislamiento, el recuento y la identificación presuntiva por color de los principales agentes de infección urinaria, y facilita reconocer los cultivos mixtos.

Fundamento

• Contiene sustratos cromogénicos: moléculas incoloras que liberan un color cuando una enzima bacteriana específica las rompe.
• β-galactosidasa (y β-glucuronidasa, según la fórmula): colonias rosadas a rojizas de Escherichia coli.
• β-glucosidasa: colonias azul turquesa de Enterococcus y azul oscuro o violeta del grupo Klebsiella-Enterobacter-Serratia.
• Triptófano desaminasa: halo marrón del grupo Proteus-Morganella-Providencia.

Lectura orientativa

Microorganismo	Color habitual de la colonia
Escherichia coli	Rosadas a rojizas
Enterococcus	Azul turquesa, pequeñas
Klebsiella, Enterobacter, Serratia	Azul oscuro a violeta; Klebsiella suele ser mucoide
Proteus, Morganella, Providencia	Beige con halo marrón
Staphylococcus aureus	Blancas a doradas, opacas
Staphylococcus saprophyticus	Rosadas pálidas, opacas, pequeñas
Pseudomonas aeruginosa	Translúcidas, a veces con pigmento verdoso
Candida	Blancas a crema, pequeñas

Los colores varían según el fabricante: la tabla de colores válida es la del inserto del lote.

Características técnicas

Característica	Valor general
Tipo de medio	Cromogénico, no selectivo, diferencial
Formato	Placa de Petri lista para usar
Aspecto	Blanquecino a ámbar muy claro, opalescente
pH final (25 °C)	Cercano a la neutralidad (según el fabricante)
Siembra	Orina sin centrifugar, con asa calibrada de 1 o 10 µL
Incubación	35 – 37 °C, en aerobiosis, 18 a 24 horas
Control de calidad sugerido	E. coli ATCC 25922, Enterococcus faecalis ATCC 29212, Klebsiella pneumoniae ATCC 13883, Proteus mirabilis ATCC 12453 y Staphylococcus aureus ATCC 25923, cada una con su color esperado

Valores generales de la formulación; los del lote se confirman en el certificado del fabricante.

Para uso diagnóstico in vitro por personal de laboratorio. Siga siempre el inserto del fabricante.

Almacenamiento

• Conservar refrigerado entre 2 y 8 °C, en su empaque original cerrado. No congelar: el hielo rompe el gel y la placa suelta agua al descongelarse.
• Guardar las placas invertidas (el agar arriba y la tapa abajo), para que el agua de condensación no caiga sobre la superficie.
• Proteger de la luz directa y del calor; no dejar junto a la pared del fondo de la nevera, donde puede congelarse.
• Evitar cambios bruscos de temperatura: producen condensación dentro de la placa.
• Usar primero el lote que vence primero y no usar después de la fecha de vencimiento.
• Los cromógenos son sensibles a la luz: una exposición prolongada colorea el medio y altera la lectura. Mantener en el empaque y en la oscuridad.

Manipulación

• Sacar de la nevera solo las placas que se van a usar y dejarlas alcanzar la temperatura ambiente antes de sembrar (unos 15 a 30 minutos, dentro de su bolsa).
• Sembrar sobre una superficie seca. Si hay gotas de condensación, secar la placa entreabierta e invertida en la incubadora o en cabina durante unos minutos.
• Trabajar con técnica aséptica (mechero o cabina de seguridad), sin tocar el agar y con la placa abierta el menor tiempo posible.
• Rotular en la base de la placa, no en la tapa.
• Devolver a la nevera las placas no usadas dentro de su bolsa cerrada, para que no se deshidraten.
• Descartar las placas usadas como residuo biológico, previa esterilización según las normas del laboratorio.
• Leer los colores con buena luz, sobre fondo blanco, entre 18 y 24 horas.
• Para el recuento, usar asa calibrada y multiplicar las colonias por el factor del asa (× 1000 con asa de 1 µL; × 100 con asa de 10 µL) para obtener UFC/mL.
• No incubar con CO₂: puede alterar los colores.

No usar la placa si

• Hay contaminación visible (colonias o película antes de sembrar).
• El agar está deshidratado: agrietado, adelgazado o despegado del borde de la placa.
• Hay cambio de color respecto al aspecto normal del medio, precipitados o exceso de agua.
• La placa está rota, el empaque llegó abierto o el lote está vencido.
• El medio tiene manchas de color o tinte azulado o rosado antes de sembrar.

Limitaciones

• La identificación por color es presuntiva: confirmar cuando el color sea atípico o el resultado tenga implicaciones clínicas.
• Algunas cepas de E. coli no expresan la enzima y crecen incoloras.
• Los microorganismos exigentes pueden no crecer: según la muestra, añadir agar sangre.
• El antibiograma se hace desde colonias aisladas, en agar Mueller-Hinton.

Referencias

• Perry JD. A decade of development of chromogenic culture media for clinical microbiology in an era of molecular diagnostics. Clinical Microbiology Reviews. 2017;30(2):449-479.
• Procop GW, Church DL, Hall GS, et al. Koneman's Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 7.ª ed. Wolters Kluwer; 2017.
• Tille PM. Bailey & Scott's Diagnostic Microbiology. 15.ª ed. Elsevier; 2022.
• Zimbro MJ, Power DA, Miller SM, Wilson GE, Johnson JA, eds. Difco & BBL Manual: Manual of Microbiological Culture Media. 2.ª ed. BD; 2009.
• Clinical and Laboratory Standards Institute. Quality Control for Commercially Prepared Microbiological Culture Media. Documento M22-A3. CLSI; 2004.

Contenido de referencia para profesionales del laboratorio de microbiología. Los datos propios del producto (lote, vencimiento, pH, control de calidad) se confirman en el inserto y el certificado del fabricante.